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质粒小提中量提取试剂盒

本试剂盒采用碱裂解法裂解细胞,根据离心吸附柱在高盐状态下特异性地结合溶液中的 DNA的原理特异性提取质粒DNA。离心吸附柱中采用的硅基质材料能高效、专一地吸附DNA,可最大限度去除杂质蛋白及细胞中其他有机化合物。使用本试剂盒提取的质粒DNA可适用于各种常规操作,包括酶切、PCR、测序、连接和转化等试验。
优惠价:
¥ 240.00

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目录价: ¥540.00
数量:
    • 产品名称
      质粒小量提取试剂盒;质粒小提中量提取试剂盒
    • 产品内容
      质粒提取试剂盒
    • 产品用途
      质粒提取
    • 储存条件
      室温保存
    • 保质期
      1年
  • 试剂盒内容

    试剂盒组成

    QR1015-50T

    QR1015-100T

    QR1015-200T

    RNaseA

    400 μL

    800 μL

    1600 μL

    溶液

    30 mL

    60 mL

    120 mL

    溶液

    30 mL

    60 mL

    120 mL

    溶液

    40 mL

    80 mL

    160 mL

    漂洗液

    30 mL

    48 mL

    96 mL

    漂洗液

    20 mL

    15 mL×2

    15 mL×4

    洗脱液

    30 mL

    60 mL

    120 mL

    吸附柱

    50

    100个

    200个

    收集管

    50个

    100个

    200个

    说明书

    1份

    1份

    1份

     

    产品说明:

    本试剂盒采用碱裂解法裂解细胞,根据离心吸附柱在高盐状态下特异性地结合溶液中的 DNA的原理特异性提取质粒DNA。离心吸附柱中采用的硅基质材料能高效、专一地吸附DNA,可最大限度去除杂质蛋白及细胞中其他有机化合物。使用本试剂盒提取的质粒DNA可适用于各种常规操作,包括酶切、PCR、测序、连接和转化等试验。

    使用前请先在漂洗液中加入无水乙醇,加入体积请参照瓶体上的标签。溶液Ⅰ在使用前先加入RNaseA(将试剂盒中提供的 RNaseA 全部加入),混匀,置于 2-8℃保存。如非指明,所有离心步骤均为使用台式离心机在室温下离心。

     

    操作步骤(仅供参考):

    1、取10-15mL细菌培养物,12000rpm离心1min,尽量吸除上清(可以通过多次离心将菌体沉淀收集到一个2mL 离心管中)

    2、向留有菌体沉淀的离心管中加入 500μL 溶液(请先检查是否已加入RNaseA),使用移液器或旋涡振荡器彻底悬浮细菌细胞沉淀。注意:如果菌块未彻底混匀,会影响裂解导致质粒提取量和纯度偏低。

    3、向离心管中加入500μL溶液,温和地上下翻转6-8次使菌体充分裂解。注意:混匀一定要温和以免污染细菌基因组DNA,此时菌液应变得清亮粘稠,作用时间不要超过5min,以免质粒受到坏。

    4、向离心管中加入700μL溶液,立即温和地上下翻转6-8次,充分混匀,此时会出现白色絮沉淀。12000rpm离心10 min,用移液器小心地将上清转移到另一个干净的离心管中,尽量不要出沉淀。注意:溶液加入后应立即混合,避免产生局部沉淀。如果上清中还有微小白色沉淀,可再次离心后取上清。

    5、将上一步所得上清液加入吸附柱中(吸附柱加入收集管中),空温放置2min12000rpm离心1min倒掉收集管中的废液,将吸附柱重新放回收集管中

    6、向吸附柱中加入500μL漂洗液12000rpm离心1min弃废液,将吸附柱放入收集管中

    7、向吸附柱中加入700μL漂洗液(使用前请先检查是否已加入无水乙醇)12000rpm离心1min弃废液,将吸附柱放入收集管中。

    8、向吸附柱中加入700μL漂洗液12000rpm 离心1min废液,将吸附柱放入收集管中

    912000rpm离心2min,将吸附柱敞口置于室温或50温箱放置数分钟,目的是将吸附柱中残余的漂洗液去除,否则漂洗液中的乙醇会影响后续的实验如酶切、PCR等。

    10、将吸附柱放入一个干净的离心管中,向吸附膜中央悬空滴加100-300μL65水浴热的洗脱液,室温放置2min12000rpm离心1min

    11、为了增加质粒的回收效率,可将得到的洗脱液重新加入吸附柱中,室温放置2min12000rpm离心1min

     

    注意事项:

    1、使用前请先检查溶液和溶液是否出现混浊,如有混浊现象,可在 37水浴中加热几分钟,待溶液恢复澄清后再使用。溶液、溶液、漂洗液和漂洗液使用后应立即拧紧盖子。

    2、洗脱缓冲液体积不应少于100μL,体积过小影响回收效率洗脱液的pH值对洗脱效率也有影响,若需要用水做洗脱液应保证其pH值在8.0左右(可用NaOH将水的pH值调至此范围)pH值低于7.0会降低洗脱效率,DNA产物应保存在-20,以防 DNA 降解。

    3DNA浓度及纯度检测得到的质粒DNA纯度与样品保存时间、操作过程中的剪切力等因素有关。得到的DNA可用琼脂糖疑胶电泳和紫外分光光度计检测浓度与纯度。DNA应在OD260处有显著吸收峰,OD260值为1相当于大约50ug/mL双链DNA40ug/mL单链DNAOD260/OD280比值应为1.7-1.9,如果洗脱时不使用洗脱缓冲液,而使用去离子水,比值会偏低,因为pH值和离子存在会影响吸光值,但并不表示纯度低。

     

     
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